【保存条件】
-20℃保存一年
【操作方法】
A: 对于贴壁细胞:用 PBS 洗一遍,用细胞刮子刮下细胞,或用 EDTA 溶液处理细胞使细胞
不再贴壁很紧,并用移液器吹打下细胞。离心收集细胞,尽最大努力吸尽上清,留下细胞沉
淀备用。(注:尽量避免用胰酶消化细胞,以免胰酶降解需抽提的目的蛋白。)
B: 对于悬浮细胞:用预冷的 PBS 清洗一遍,离心收集细胞,尽最大努力吸尽上清,留下细
胞沉淀备用。
C: 对于组织:建议先用将组织剪成小块,然后使用匀浆器加入预冷缓冲液 C 匀浆(冰上处
理)。注意:手动方法可能适用于某些软组织,例如大脑。
1. 从组织/细胞中提取各组分蛋白
①使用前在 Buffer C、N、M 中加入蛋白酶抑制剂(磷酸化研究则需同时添加磷酸酶抑制
剂,现配现用)。
②收集细胞,建议数量量 5-10×10 6个细胞,加入 240μl 移液预冷缓冲液 C(含抑制剂)。
如有必要,可以增加使用更多缓冲液 C。不建议降低使用量,因为如果溶液变得太稠,这将影响细胞成分的分离。组织量最小不小于 40mg(每 g
组织加入约 2ml 预冷缓冲液 C),太小的组织蛋白提取出来后浓度过低。
③通过涡旋使细胞充分分散,持续 20 秒或至细胞完全分散。
若细胞贴壁过紧无法涡旋分散则用移液器吹打至均匀,组织则加入缓冲液 C 后低温匀浆至完全均质化。
④在 4°C 下孵育混合物 10 分钟(震荡孵育有助于更好裂解)。
⑤将混合物在 4°C 下以最高转速或 13,000 g 转速下离心 10 分钟。吸出上清液并将其保存
到另一个干净离心管中,上清液即为细胞质蛋白。
沉淀包含膜、细胞核部分,放在冰上继续后续操作。离心转速越高越利于分离,离心时间亦可延长至 20 分钟。
⑥加入 300μl 预冷缓冲液 C(无需蛋白酶抑制剂等)洗涤并重悬沉淀。
每克组织加入 1.5ml 预冷缓冲液 C 清洗。
⑦在 4°C 下孵育混合物 5 分钟(震荡孵育有助于更好清洗)。
本步骤主要目的是清洗,低温下有利于蛋白稳定。
⑧在 4°C 下再次以最高转速或 13,000 g 转速下离心 10 分钟。小心地倒掉上清液并丢弃,
必要时用纸巾擦拭管子的边缘。
该洗涤步骤仅有助于减少与细胞质蛋白的交叉污染,如果需要,可以重复多一次该步骤以减少交叉污染。
⑨向沉淀中加入 100μl 预冷缓冲液 N,并从上一步骤中重悬沉淀。
⑩在 4°C 下孵育混合物 10 分钟(震荡孵育有助于更好裂解)。
11.在 4°C 下以最高转速或 13,000 g 转速下离心 10 分钟。取出上清液并将其保存到另一个
离心管中,核蛋白位于该上清液中。
剩余含膜蛋白沉淀离心管放在冰上,继续下游操作。
12. 用每克组织 300μl 预冷缓冲液 C(无需蛋白酶抑制剂等)洗涤并重悬沉淀。
本步骤主要目的是清洗,低温下有利于蛋白稳定。
13. 在 4°C 下再次以最高转速或 13,000 g 转速下离心 10 分钟。小心地倒掉上清液并丢弃,
必要时用纸巾擦拭管子的边缘。
该洗涤步骤仅有助于减少与细胞核蛋白的交叉污染,如果需要,可以重复多一次该步骤以减少交叉污染。
14. 向沉淀中加入每克组织 100μl 预冷缓冲液 M 并重悬。
15. 在 4°C 下摇床震荡轻轻混合混合物 20 分钟(可增加超声 10 秒促溶解)。
建议增加超声过程有助于膜蛋白的溶解,10 秒每次,可多次超声。
16. 在 4°C 下以最高转速或 13,000 g 离心 10 分钟。取出上清液并将其保存到另一个离心管
中,膜蛋白位于该上清液中。
【注意事项】
1. 该产品仅实验室使用,不适合农业/家庭/临床用途使用。
2. 为了您的安全与健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。