【保存条件】 室温保存，有效期1年 【概述】 本抗原修复液采用了广泛使用的EDTA，可以有效去除醛类固定试剂导致的蛋白之间的交联，充分暴露石蜡切片等样品中的抗原表位，从而大大改善免疫染色效果。通常石蜡切片都需进行抗原修复处理，而冰冻切片可以不进行抗原修复处理。抗原修复会大大改善石蜡切片的免疫染色效果，但对于冰冻切片的染色效果很多文献资料表明也有显著改善。特别是当冰冻切片免疫染色效果欠佳时，可以考虑尝试进行抗原修复。从原理上来看，无论冰冻切片还是细胞爬片等，只要是用多聚甲醛、甲醛或其它醛类试剂固定的样品，进行抗原修复都会有效去除蛋白之间的交联，充分暴露抗原表位，从而大大改善免疫染色效果。 【操作方法】 1. 对于石蜡切片： a. 脱蜡：二甲苯3次，每次3-5min→ 无水乙醇2次，每次3-5min→ 95％乙醇1次，3-5min→ 90%乙醇1次，3-5min→ 75％乙醇1次，3-5min→ 蒸馏水洗2次，每次3-5min。 b. 抗原修复： ① 用去离子水稀释EDTA抗原修复液(50×,pH8.0)至1×，例如1ml本抗原修复液(50×)加入49ml去离子水，混合均匀，即得50ml 1×抗原修复液； ② 将切片浸泡在抗原修复液(1×)中；95-100℃加热约 15 min (加热时间可以控制在10-20 min内，最佳的加热时间需根据不同的样品和目的蛋白自行摸索)。抗原修复液(1×)使用前需预热到 95-100℃。加热可以使用普通的水浴锅，也可以使用微波炉加热。如果使用微波炉加热，需注意避免暴沸和过多的水分蒸发。 随后大约在20-30 min 内冷却至室温。 ③ 用免疫染色洗涤液洗涤 1-2次，每次3-5 min。随后即可进行封闭等后续的免疫染色步骤。 2. 对于冰冻切片： ① 用去离子水稀释EDTA抗原修复液(50×,pH8.0)至1×，例如1ml本抗原修复液(50×)加入49ml去离子水，混合均匀，即得50ml 1×抗原修复液； ② 用免疫染色洗涤液洗涤切片5min； ③ 将切片浸泡在抗原修复液 (1×)中，95-100℃加热约15 min (加热时间可以控制在10-20 min内，最佳的加热时间需根据不同的样品和目的蛋白自行摸索)。抗原修复液(1×)使用前需预热到95-100℃。加热可以使用普通的水浴锅，也可以使用微波炉加热。如果使用微波炉加热，需注意避免暴沸和过多的水分蒸发。随后大约在 20-30 min 内冷却至室温。 ④ 用免疫染色洗涤液洗涤1-2 次，每次3-5 min。随后即可进行封闭等后续的免疫染色步骤。 3. 对于其它样品的抗原修复，可以参考石蜡切片或冰冻切片的步骤进行。 【注意事项】 1. 本品含Tween-20，可提高细胞通透性，95-100℃加热时出现气泡属于正常现象。 2. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 3. 用后请及时拧紧瓶盖，以防挥发。

EDTA Antigen Retrieval Solution,1×,pH8.0

【保存条件】 室温保存,有效期1年 【概述】 柠檬酸钠抗原修复液(Citrate Antigen Retrieval Solution)是一种最常用的抗原修复液，可以用于石蜡切片、冰冻切片等样品使用多聚甲醛、甲醛或其它醛类试剂固定后的抗原修复。 细胞或组织用多聚甲醛、甲醛或其它醛类试剂固定后，会导致蛋白之间的交联(cross-link)，从而遮蔽样品的抗原位点，导致免疫染色时染色信号减弱，甚至出现一些假阳性染色结果。本抗原修复液采用了广泛使用的柠檬酸钠缓冲液(pH6.0)，可以有效去除醛类固定试剂导致的蛋白之间的交联，充分暴露石蜡切片等样品中的抗原表位，从而大大改善免疫染色效果。 【操作方法】 1. 对于石蜡切片： a. 脱蜡：切片在二甲苯中脱蜡5分钟，再换用新鲜的二甲苯脱蜡，共用二甲苯脱蜡3次。无水乙醇5分钟，两次。90%乙醇5分钟，两次，70%乙醇5分钟，一次。蒸馏水5分钟，两次。 b. 抗原修复：用重蒸水或Milli-Q水将本抗原修复液(50×)稀释50倍，配制成抗原修复液(1×)，例如1ml本抗原修复液(50X)加入49ml重蒸水或Milli-Q水，混合均匀，即得50ml抗原修复液(1×)。将切片浸泡在抗原修复液(1×)中，95-100℃加热约20分钟(加热时间可以控制在10-30分钟内，最佳的加热时间需根据不同的样品和目的蛋白自行摸索)。抗原修复液(1×)使用前需预热到95-100℃。加热可以使用普通的水浴锅，也可以使用微波炉加热。如果使用微波炉加热，需注意避免暴沸和过多的水分蒸发。随后大约在20-30分钟内冷却至室温。用免疫染色洗涤液洗涤1-2次，每次3-5分钟。随后即可进行封闭等后续的免疫染色步骤。 2. 对于冰冻切片： 用免疫染色洗涤液洗涤切片5分钟。将切片浸泡在抗原修复液(1×)中，95-100℃加热约20分钟(加热时间可以控制在10-30分钟内，最佳的加热时间需根据不同的样品和目的蛋白自行摸索)。抗原修复液(1×)使用前需预热到95-100℃。加热可以使用普通的水浴锅，也可以使用微波炉加热。如果使用微波炉加热，需注意避免暴沸和过多的水分蒸发。随后大约在20-30分钟内冷却至室温。用免疫染色洗涤液洗涤1-2次，每次3-5分钟。随后即可进行封闭等后续的免疫染色步骤。 3. 对于其它样品的抗原修复：可以参考石蜡切片或冰冻切片的步骤进行。 【注意事项】 1. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 2. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

【保存条件】 4ºC保存,有效期一年 【概述】 Tris抗原修复液是一种常用的抗原修复液，可以用于石蜡切片、冰冻切片等样品使用多聚甲醛、甲醛或其它醛类试剂固定后的抗原修复。 细胞或组织用多聚甲醛、甲醛或其它醛类试剂固定后，会导致蛋白之间的交联(cross-link)，从而遮蔽样品的抗原位点，导致免疫染色时染色信号减弱，甚至出现一些假阳性染色结果。 本抗原修复液采用了广泛使用的Tris，可以有效去除醛类固定试剂导致的蛋白之间的交联，充分暴露石蜡切片等样品中的抗原表位，从而大大改善免疫染色效果。 【操作方法】 1. 对于石蜡切片： a. 脱蜡：二甲苯3次，每次3-5min→ 无水乙醇2次，每次3-5min→ 95％乙醇1次，3-5min→ 90%乙醇1次，3-5min→ 75％乙醇1次，3-5min→ 蒸馏水洗2次，每次3-5min。 b. 抗原修复： ① 用去离子水稀释Tris抗原修复液(10×,pH10.0)至1×，例如10ml本抗原修复液(10×)加入90ml去离子水，混合均匀，即得100ml 1×抗原修复液； ② 将切片浸泡在抗原修复液(1×)中；95-100℃加热约 15 min (加热时间可以控制在10-20 min，最佳的加热时间需根据不同的样品和目的蛋白自行摸索)。抗原修复液(1×)使用前需预热到 95-100℃。加热可以使用普通的水浴锅，也可以使用微波炉加热。如果使用微波炉加热，需注意避免暴沸和过多的水分蒸发。 随后大约在20-30 min 内冷却至室温。 ③ 用免疫染色洗涤液洗涤 1-2次，每次3-5 min。随后即可进行封闭等后续的免疫染色步骤。 2. 对于冰冻切片： ① 用去离子水稀释Tris抗原修复液(10×,pH10.0)至1×，例如10ml本抗原修复液(10×)加入90ml去离子水，混合均匀，即得100ml 1×抗原修复液； ② 用免疫染色洗涤液洗涤切片5min； ③ 将切片浸泡在抗原修复液 (1×)中，95-100℃加热约15 min (加热时间可以控制在10-20 min内，最佳的加热时间需根据不同的样品和目的蛋白自行摸索)。抗原修复液(1×)使用前需预热到95-100℃。加热可以使用普通的水浴锅，也可以使用微波炉加热。如果使用微波炉加热，需注意避免暴沸和过多的水分蒸发。随后大约在 20-30 min 内冷却至室温。 ④ 用免疫染色洗涤液洗涤1-2 次，每次3-5 min。随后即可进行封闭等后续的免疫染色步骤。 3. 对于其它样品的抗原修复，可以参考石蜡切片或冰冻切片的步骤进行。 【注意事项】 1. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 2. 用后请及时拧紧瓶盖，以防挥发。

【保存条件】 -20℃避光保存，有效期1年 【概述】 抗荧光淬灭封片剂(Antifade Mounting Medium)是一种用于减缓荧光淬灭的封片试剂。可以用于减缓各种常见荧光染料的荧光淬灭，本品可用于常见荧光减缓，不适用于Cy染料的免疫荧光。 【使用建议（仅供参考）】 1. 贴壁细胞样品： A. 染色完毕后，吸尽液体。 B. 滴一滴抗荧光淬灭封片液于载玻片上，盖上贴有细胞的盖玻片，让细胞接触封片液，尽量避免气泡。 C. 随后即可在荧光显微镜下观察细胞样品。 2. 组织切片： A. 染色完毕后，吸尽液体。 B. 滴一滴抗荧光淬灭封片液于组织切片上，盖上盖玻片，让切片接触封片液，尽量避免气泡。 C. 随后即可在荧光显微镜下观察组织切片。 【注意事项】 1. 本品含高浓度甘油，较为粘稠，吸取时稍微留意。 2. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作

红细胞裂解液（RBC lysing buffer)使用说明书【包装规格】产品编号产品名称包装ES-82331×Red Blood Cell Lysis Buffer (RBC Lysis Buffer), Sterile100ml 使用说明书1份【保存条件】4℃或室温避光保存12个月【概述】本裂解液经过优化配方，在裂解红细胞的同时几乎不损伤淋巴细胞(lymphocyte)或其它有细胞核的细胞。本裂解液的主要有效成分为氯化铵。本裂解液经过无菌处理，处理过的血液或组织细胞样品可以用于后续的原代培养、细胞融合以及核酸或蛋白的提取及各种常规的分析和检测。【使用建议（仅供参考）】1. 使用前应将红细胞裂解液恢复至室温。1倍体积的新鲜全血加入3倍体积的红细胞裂解液。如1ml新鲜全血加入3ml红细胞裂解液，吹打混匀或颠倒混匀。2. 冰上放置15分钟，其间轻轻涡旋混匀两次，红细胞裂解后，溶液应该是清亮透明的。3. 收集细胞：4℃，450×g离心10分钟以沉淀白细胞，小心吸弃上清液。4. 向白细胞沉淀中加入两倍体积的红细胞裂解液，轻轻涡旋充分重悬白细胞。如起始血液为1ml，则加入2ml的红细胞裂解液。5. 4℃，450×g离心10分钟沉淀白细胞，小心并彻底吸去上清液。6. 重悬细胞，用于后续实验；如提取RNA，最好于此步开始使用DEPC水配制的溶液进行操作。（组织细胞处理：新鲜组织经胰酶或胶原酶等消化分散成单个细胞悬液，离心弃去上清液，其余同上。）【注意事项】1. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。2. 本裂解液为无菌产品，分离细胞用于细胞培养时请注意无菌操作。

【保存条件】 2-8℃存储，有效期1年 【概述】 本产品是10倍浓缩的DNA上样缓冲液，用于DNA凝胶电泳，能促使DNA样品沉入凝胶加样孔中。其主要成份为甘油，EDTA，溴酚蓝和二甲苯青等。溴酚蓝和二甲苯青用作电泳时的指示剂，可指示电泳进程。 【使用建议】 1. 请按9微升DNA样品加入1微升10×DNA Loading Buffer上的比例(10倍稀释)来使用。 2. 混匀后，直接加到DNA凝胶加样孔中，电泳。 【注意事项】 1. 若单次使用量较小，可分装保存，避免污染。 2. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 3. 该试剂仅用于科研领域，不宜用于临床诊断或其他用途。

【保存条件】 室温保存，有效期2年 【概述】 用于蛋白非变性及变性聚丙烯酰胺凝胶电泳实验（SDS-PAGE）中的转膜试剂。本产品为粉剂，请配成溶液使用。 【使用建议】 1. 加入蒸馏水或去离子水定容至1L，混匀后即为1×工作液，可直接使用。。 2. 本产品不含SDS，蛋白分子量较大或者疏水性较强时，为增加转膜效果，可适当添加少量SDS（参考工作浓度为0.025-0.1%）。 【注意事项】 1. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

【保存条件】 室温保存，有效期1年 【概述】 丽春红（Ponceau S）也称猩红，可以用于PVDF膜、硝酸纤维素膜（nitrocellulose membrane）和醋酸纤维素膜（cellulose acetate membrane）上的蛋白的检测。丽春红带负电荷，可以与带正电荷的氨基酸残基结合，同时丽春红也可以与蛋白的非极性区相结合，从而形成红色的条带。 丽春红染色的灵敏度不及考马斯亮蓝染色。丽春红对蛋白的染色是可逆的，染色后可以用蒸馏水，PBS或其它适宜的溶液洗去。 本试剂盒使用方便，本底低，灵敏度较高，对蛋白的检测下限是250ng。 【使用建议】 1. 本产品为10×溶液，使用前请用去离子水将溶液稀释至1×备用。如1ml 10×丽春红染色液加入9ml 去离子水稀释。 2. 将PVDF膜、硝酸纤维素膜或醋酸纤维素膜浸没在1×丽春红染色液中，摇动3-5分钟或更长时间，直至出现清晰条带。对结果作适当记录。 3. 用蒸馏水，PBS或其它适当溶液漂洗2-3次，每次3-5分钟，去除丽春红，进行后续的Western检测。 【注意事项】 1. 丽春红染色液不适用于尼龙膜上的蛋白的检测。 2. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

【保存条件】 4℃保存，有效期1年 【概述】 丽春红（Ponceau S）也称猩红，可以用于PVDF膜、硝酸纤维素膜（nitrocellulose membrane）和醋酸纤维素膜（cellulose acetate membrane）上的蛋白的检测。丽春红带负电荷，可以与带正电荷的氨基酸残基结合，同时丽春红也可以与蛋白的非极性区相结合，从而形成红色的条带。 丽春红染色的灵敏度不及考马斯亮蓝染色。丽春红对蛋白的染色是可逆的，染色后可以用蒸馏水，PBS或其它适宜的溶液洗去。 本试剂使用方便，本底低，灵敏度较高，对蛋白的检测下限是250ng。 【使用建议】 1. 将PVDF膜、硝酸纤维素膜或醋酸纤维素膜浸没在1×丽春红染色液中，摇动3-5分钟或更长时间，直至出现清晰条带。对结果作适当记录。 2. 用蒸馏水，PBS或其它适当溶液漂洗2-3次，每次3-5分钟，去除丽春红，进行后续的Western检测。 【注意事项】 1. 丽春红染色液不适用于尼龙膜上的蛋白的检测。 2. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。