产品介绍 本试剂盒采用可高效、专一结合DNA的硅基质材料和独特的缓冲液系统，可从各种浓度的TAE或TBE琼脂糖凝胶上回收70bp-10kbp大小的DNA片段，同时除去蛋白质、其它有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质，回收率可达80%以上。每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为20μg。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。 存储条件 该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存12个月。Buffer QG可能产生沉淀，若有沉淀使用前可在55℃水浴中预热10 min以溶解。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml离心管 开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 □ 电泳时最好使用新的电泳缓冲液，以免影响电泳和回收效果。 □ 如下一步实验要求较高，核酸电泳时则应尽量使用TAE电泳缓冲液。 □ 切胶时，紫外照射时间应尽量短，以免对DNA造成损伤。 □ 如果回收率较低，可在胶充分溶解后检测pH值，如pH值大于7.5，可向含有DNA的胶溶液中加10-30µl 3M醋酸钠（pH5.2）将pH值调到5-7之间。 □ 回收<70bp或>10kbp的DNA片段时，应加大Buffer QG的体积，延长吸附和洗脱时间。 □ 回收率与初始DNA量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。 □ 高温及潮湿等不利环境因素对吸附柱产生影响，请将吸附柱储存于阴凉干燥的环境中。 开始前试剂准备 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 □ 确认Buffer QG溶液显示为黄色。 DNA浓度及纯度检测 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品介绍 本试剂盒适用于哺乳动物血液核酸提取，不含苯酚等有毒化学试剂组分，采用独特的缓冲液配方Buffer IRB最大限度去除血液抑制剂的影响，同时应用先进的硅胶膜吸附技术，操作简单、快速。得到的DNA 比传统试剂盒纯度更高，可直接用于酶切、转化、测序及PCR 等分子生物学实验。 存储条件 本产品除Proteinase K溶液和RNase溶液外，可在室温(15~25℃)保存12个月。低温下Buffer BL或Buffer IRB可能会有沉淀形成，使用时需55℃水浴让沉淀完全溶解。Proteinase K溶液和RNase A溶液冰袋运输，收到产品后请分装保存于-20℃。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5/2ml离心管 开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 ● Buffer BL和Buffer IRB是如有混浊现象，可在55℃水浴中加热几分钟，即可恢复澄清。 ● 基因组提取所有步骤都在室温（15-25°C）下进行。 开始前试剂准备 □ 按瓶子标签所示，Buffer BL及Buffer IRB中加入适量的无水乙醇稀释，于室温密封保存。 DNA浓度及纯度检测 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测纯度与浓度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O，比值会略低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。 应用领域 该方案适合于从约10μl-1ml人类的抗凝血液、血清、血浆、尿液、或其它体液样品中直接提取总DNA。该方案直接对样品进行裂解消化，获得的DNA包括了基因组 DNA(如淋巴细胞、线粒体DNA、游离的DNA(>100bp)、以及病毒DNA(如乙肝)等；

【保存条件】 -20℃保存一年 【概述】 细胞培养基中有时加入适量浓度的抗生素，可以有效防止微生物的污染。本品青霉素的含量为10kU/ml，链霉素的含量为10mg/ml。该溶液用0.9%氯化钠配制，经0.22μm滤膜过滤除菌，使用时按照100倍稀释使用即可。 【使用建议（仅供参考）】 1. 在无菌的细胞培养液中直接添加：按照每500ml细胞培养液添加5ml的比例加入青链霉素混合液(100×)，混匀即可使用。 2. 配制非无菌细胞培养液时加入，然后再过滤除菌：配制细胞培养液时按照每配制1L细胞培养液加入10ml 的比例加入青链霉素混合液(100×)，配制完成后过滤除菌即可使用。 【注意事项】 1. 尽量减少反复冻融的次数。 2. 注意无菌操作，尽量避免污染。 3. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

【保存条件】 4℃避光保存12月 【概述】 超敏发光液用于检测直接或间接标记辣根过氧化物酶 HRP 的抗体及其关联的抗原。 用于 HRP 标记抗体的 Western Blot 和 HRP 标记探针的核酸杂交。由于采用了独特的发光底物系统，SuperStar ECL超敏发光液是目前最灵敏的商业化荧光 ECL 检测试剂（具有极高灵敏度和高信噪比）；可在日光灯下进行发光操作；发光迅速，荧光可使 X 光胶片感光达 12 小时以上，特别适用于痕量蛋白或核酸检测；可使用更高的抗体稀释倍数(1:2000～1:10000)， 极其节省抗体。 【特点】 n 飞克级灵敏度 - 在硝酸纤维素或PVDF膜上检测低至飞克量的目标蛋白量 n 高信号稳定性 - 孵育印迹在关键的4小时时间内提供稳定的信号持续时间，在最佳条件下可产生长达24小时的光输出 n 稳定的试剂 - 在4℃下1年的试剂盒稳定性 n 更经济的抗体用量： 0.2至1.0μg/ mL一抗（从1 mg / mL原液中1：1000至1：5000稀释） 10至50 ng / mL二级抗体（从1 mg / mL原液中1：20,000至1：100,000稀释） 【操作方法】 1. 执行常规 SDS-PAGE、转膜和 Western Blot 步骤。注意用 HRP 标记 lgG 或用一抗-链亲和素-生物素-HRP夹法。 2. Western Blot 最后一次洗膜的同时新鲜配制发光工作液：分别取A:B=1:1混合（如需要1ml发光液则取500ul ECL A液和500ul ECL B液混合），放入干净容器中混合。建议立即使用工作液，室温放置数小时后仍可使用但灵敏度略有降低。 3. 用镊子取出膜，搭在滤纸上沥干洗液但勿使膜完全干燥。将膜完全浸入发光工作液(0.125ml发光工作液/cm2 膜)中，与发光工作液充分接触。室温孵育2分钟，准备立即压片曝光。孵育时间过长不会增加灵敏度，有时还会导致曝光条带异常。发光过程的本质是酶促反应，使用过少的发光工作液不利反应进行，也会导致膜上条带曝光不均和明显降低灵敏度。为达节约目的可将 膜剪小但勿降低发光液用量。 4. 用镊子夹起膜，搭在滤纸上沥干发光工作液。但勿洗去发光液。 5. 打开X光胶片暗盒，在暗盒内表面铺一张面积大于膜的保鲜膜。将Western Blot膜贴在保鲜膜上，将保鲜膜折起来完全包裹Western Blot膜，去除气泡和皱褶，可剪去边缘部多余的保鲜膜。用滤纸吸去多余的发光工作液。用胶带将覆盖Western Blot膜的保鲜膜固定在暗盒内，蛋白带面向上。 6. 暗房内压X光胶片，分别曝光不同的时间如数秒到数分钟。显影冲洗。 【注意事项】 1. 步骤 1～5 可在日光灯下操作;但发光液曝露于强光下时间过久灵敏度可能略有降低，移到暗房操作可避免之。戴手套可以避免在膜上留下手印。 2. 长时间曝光或蛋白过量，将加深背景并使条带强弱变化失去线性关系。曝光不足则条带模糊。 3. 发光工作液孵育约2分钟后膜上的条带发光。强条带发光在暗房中肉眼可见，低丰度蛋白条带发光较弱甚至肉眼不可见但可使 X 光胶片曝光。不能简单以肉眼观察判断条带发光时间。肉眼不可见的荧光实际上可持续数小时并使X光胶片感光，因而弱带可曝光1-10 小时。如果曝光后条带不佳，可用洗膜缓冲液洗膜，重新孵育二抗，然后配制新的ECL工作液重新发光和曝光。 4. 由于超敏发光液极其灵敏，强烈推荐大多数进口抗体起始浓度为一抗 1:1000～1:4000，二抗 1:2000～1:5000。抗体浓度过高将造成高背景或没有条带，导致失败。 5. 某些保鲜膜包裹印迹膜时可能会淬灭荧光，应选择高质量保鲜膜。 6. 使用肉眼可见的预染色蛋白Marker 和荧光-放射自显影曝光标签可精确确定胶片上条带的位置和大小。 7. NaN3能抑制HRP活性，回收第二抗体应避免使用NaN3，如必需使用勿超过0.01%。

【保存条件】 -20ºC保存2年 【概述】 √ Ecotop品牌高效转染试剂（GO3000 HiTrans Reagent），适用于真核哺乳动物细胞转染，有毒性低、转染效率高等特点。 √ 适用于：293T/293A/HEK293/CHO/Hela等哺乳动物细胞，转染效率可高达90%以上。通常293细胞转染效率可以高达90%以上。大多数常见的细胞例如Hela细胞、CHO细胞等也都适合用该试剂转染，但效率比293细胞要略低一些。 √ 应用：细胞瞬时转染、慢病毒包装、腺病毒包装、AAV病毒包装、逆转录病毒包装 √ 本试剂经过0.22μm过滤器除菌处理，可直接使用。 【操作方法】 1. 对于贴壁细胞（以下均以6孔板为例，其它培养皿或培养板请根据相应面积换算）： a. 将细胞培养于培养皿或培养板内，通常在铺板后1-2天内长到70-90%。 b. 在转染前1-2小时，吸去细胞培养液，更换为新鲜的不含抗生素的完全培养液2ml。 c. 取2-4μg待转染的质粒DNA (质粒总体积不宜超过20μl，若有多种质粒请混匀)，以质量体积比1：3加入转染试剂6~12μl（如2μg待转染的质粒DNA加入转染试剂6μl）。 d. 混匀后，室温孵育3-5分钟。 e. 把DNA-转染试剂混合物中加入500μl opti-MEM（若无opti-MEM可使用无血清无双抗的DMEM或1640，具体根据转染细胞使用的培养基）,充分混匀后静置10-15分钟。 f. 后均匀滴加到整个6孔板内（加入前吸出原培养板中500μl培养基），并置于含5%二氧化碳的37ºC细胞培养箱内培养。 g. 在转染后4-6小时左右换液，更换为2ml新鲜的完全培养液，继续培养。 h. 通常在转染约24-48小时后就可以检测到转染基因的表达。 2. 对于悬浮细胞： a. 离心收集悬浮细胞，用PBS洗涤一次。 b. 按照上面的步骤c)、d)、e）制备DNA-转染试剂-optiMEM混合物。 c. 每106个细胞的沉淀，用500微升DNA-转染试剂-optiMEM混合物重新悬浮，室温放置15-20分钟。 d. 在一个6孔板孔内加入1.5ml完全培养液，然后加入来自上一步的细胞-500微升DNA-转染试剂-optiMEM混合物，混匀。 e. 在含5%二氧化碳的37ºC细胞培养箱内培养。 f. 根据实验要求和转染试剂对于不同细胞的毒性不同，在4-6小时后离心收集细胞，用PBS洗一次，然后用2毫升完全培养 液重新悬浮细胞，继续培养。 g. 通常在转染约24-48小时后就可以检测到转染基因的表达。 【效果图】 【各种类细胞转染效率（仅供参考）】 细胞种类 中文名称 转染效率 HEK293 人胚肾细胞 90%-95% 293-T 人胚肾细胞 90%-95% CHO-K1 仓鼠卵巢细胞 80%-90% U251 人源神经胶质瘤细胞 80%-90% Hela 人源宫颈癌细胞 70%-80% COS7 猴SV40转化肾细胞 70%-80% HepG2 人源肝癌细胞 70%-80% NIH/3T3 小鼠胚胎成纤维细胞 60%-70% 胶质瘤干细胞 人源胶质瘤干细胞 60%-70% Patu8988 人源胰腺癌细胞 60%-70% U2OS 人源骨肉瘤细胞 60%-70%

【保存条件】 -20℃保存,有效期2年 【概述】 0.25%胰酶细胞消化液(含EDTA)含0.25%胰酶、EDTA和酚红，pH值为7.2-7.8。该消化液经过过滤除菌，可以直接用于培养细胞的消化，或者一些组织的消化。 【使用建议（仅供参考）】 1. 贴壁细胞的消化：a.吸去培养液，用无菌的PBS、Hanks液或无血清培养液洗涤细胞一次，以去除残余的血清。b.加入少量0.25%胰酶细胞消化液(含EDTA)，略盖过细胞即可，室温放置30秒至2分钟。不同的细胞消化时间有所不同。c.显微镜下观察，细胞明显收缩，并且肉眼观察培养器皿底部发现细胞的形态发生明显的变化；或者用枪吹打细胞发现细胞刚好可以被吹打下来。此时吸除胰酶细胞消化液。加入含血清的完全细胞培养液，吹打下细胞，即可直接用于后续实验。d.如果发现消化不足，则加入胰酶细胞消化液重新消化。如果发现细胞消化时间过长，未及吹打细胞，细胞已经有部分直接从培养器皿底部脱落，直接用胰酶细胞培养液把细胞全部吹打下来。1000-2000g离心1分钟，沉淀细胞，尽量去除胰酶细胞消化液后，加入含血清的完全培养液重新悬浮细胞，即可用于后续实验。2. 组织的消化：a.不同的组织需要消化的时间相差很大，通常以消化后可以充分打散组织为宜。 【注意事项】 1. 胰酶消化细胞时间不宜过长，否则细胞铺板后生长状况会较差。 2. 注意无菌操作，尽量避免污染。 3. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

【保存条件】 室温保存，有效期1年 【概述】 PBS（phosphate buffered solution）即磷酸盐缓冲液，能够提供相对稳定的离子环境和pH缓冲能力，是生物学中经常使用的缓冲盐溶液,用于分子克隆及细胞培养等，pH为7.2-7.4，与人体血液等渗，主要成分为磷酸二氢钾、氯化钾、磷酸氢二钠以及氯化钠. 本产品为1×工作液，经过除菌处理，可直接使用。 4℃保存可延长产品保质期，长期不用建议低温保存。 【注意事项】 1.PBS溶液在低温情况下可能会产生沉淀。如果发现有沉淀产生，请置于37℃水浴至完全溶解后再使用。 2.PBS溶液在使用过程中应该避免微生物污染。 3.为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

【操作方法】 1. 样品处理：a. 组织：将组织在液氮中研磨，磨碎后及时于每50-100mg组织中加入1ml RNAEx ZOL Reagent，样品体积不应超过RNAEx ZOL Reagent体积的10%（或使用匀浆仪器）。b. 单层细胞：直接在培养皿中裂解细胞，如35mm直径的培养皿中加入1ml RNAEx ZOL Reagent，使用吸头吹匀促进细胞裂解。RNAEx ZOL Reagent的试剂量基于培养的表面积而不是细胞数量（每10cm2加入1ml RNAEx ZOL Reagent），RNAEx ZOL Reagent试剂量不足可能会导致分离出的RNA有DNA污染。c. 悬浮细胞：先低速离心沉淀细胞，弃培养液后加入RNAEx ZOL Reagent（1ml RNAEx ZOL Reagent加入至5×106动物、植物、酵母或细菌细胞中）。加入RNAEx ZOL Reagent前避免洗涤细胞，这容易导致mRNA降解。一些酵母和细菌细胞的裂解可能需要使用均质器。可选：一些样品可能需要额外的分享步骤，这些样品蛋白质、脂肪、多糖或细胞外基质含量高，如肌肉、脂肪组织、以及部分植物块茎。在根据上述方式处理后，于2-8°C，12000g离心10分钟，移除沉淀不溶物，RNA存于上清中。 2. 相分离a. 将加完RNAEx ZOL Reagent后的样品在室温（15-30°C）静置5分钟，以利于样品核蛋白体完全分离b. 按每1ml RNAEx ZOL Reagent加入0.2ml 氯仿（自备），小心盖好样品管后，剧烈震荡15秒，后置于室温（15-30°C）静置2-3分钟。c. 2-8°C，10000g离心15分钟。离心后，混合物分离为下层（酚-氯仿相）、中间相以及上层无色水相。RNA存在于上层无色水相中，体积约为最初加入RNAEx ZOL Reagent体积的60%左右。RNA分离提取步骤： 1. RNA沉淀a. 将上述水相转移到一个新的管中，并保存有机相（若希望分离DNA或蛋白质）。混合异丙醇从水相中沉淀RNA，每1ml 用于初始裂解的RNAEx ZOL Reagent使用0.5ml 异丙醇，室温（15-30°C）静置10分钟。b. 2-8°C，10000g离心10分钟。离心前看不出RNA沉淀，离心后在管侧和管底会出现胶状沉淀即为RNA沉淀。2. RNA洗涤a. 弃上清。用75%乙醇洗涤RNA沉淀一次，每毫升用于初始裂解的RNAEx ZOL Reagent试剂使用至少1ml 75%乙醇，涡旋混匀后于2-8°C，不超过7500g离心5分钟，弃上清3. 溶解RNAa. 在上述过程结束后，简单干燥RNA沉淀（空气干燥或真空干燥5-10分钟，不要真空离心离心干燥RNA）。重要的是不要让RNA沉淀过于干燥，这将大大降低其溶解度。加入25-200μl无RNase水或0.5% SDS，用吸头吹打几次至溶解，于50-60°C放置10分钟使RNA彻底溶解（注：若后续进行酶学实验，请勿使用0.5% SDS溶液溶解）。溶解后置于-80°C保存。DNA分离提取步骤： 1. DNA沉淀a. 样品加入氯仿分层后，移去上层水相提取RNA，吸取中间层和有机层的DNA用乙醇沉淀。每使用1ml RNAEx ZOL Reagent加入0.3ml 无水乙醇混匀，室温静置2-3分钟，2-8°C不超过2000g离心5分钟以沉淀DNA。 2. DNA洗涤a. 移去苯酚-乙醇上清液（如需要，保存上清用于蛋白质分离，操作见下）。用0.1M的柠檬酸钠溶液（溶于10%乙醇的柠檬酸钠溶液）清洗沉淀的DNA。每毫升用于初始的RNAEx ZOL Reagent试剂添加1ml 溶液。每次清洗时，室温静置30分钟DNA沉淀（间歇混匀），2-8°C 2000g离心5分钟，弃上清。重复一次。b. 用75%乙醇再洗一遍DNA沉淀，每使用1ml RNAEx ZOL Reagent加入1.5-2ml 75%乙醇，室温放置10-20分钟（间歇混匀），2-8°C 2000g离心5分钟，弃上清。c. 室温放置晾干DNA 5-15分钟，用8mM NaOH溶解DNA。从50-70mg组织或107细胞中分离的DNA溶于300-600μl 8mM的NaOH溶液中，浓度常为0.2-0.3μg/μl。注：提取的DNA沉淀不易溶于水和Tris缓冲液中，建议用弱碱溶解，8mM NaOH的pH值为9，NaOH溶液溶解后可用TE、HEPES调节PH。从某些样品（尤其是组织）中提取的DNA中可能包含一些胶状不溶物可用>12000g离心10分钟除去。 蛋白质分离操作步骤： 1. 蛋白质沉淀a. 苯酚-乙醇上清液（每1ml RNAEx ZOL Reagent试剂上清体积约0.8ml）中加入异丙醇可沉淀出蛋白质。每毫升用于初始裂解RNAEx ZOL Reagent试剂中添加1.5ml 异丙醇，室温静置10分钟，然后2-8°C 12000g离心10分钟以沉淀蛋白质，弃上清。2. 蛋白质洗涤a. 用0.3M盐酸胍溶液（溶于95%乙醇）洗涤蛋白质沉淀3次。每毫升用于初始裂解的RNAEx ZOL Reagent试剂中添加2ml 0.3M盐酸胍溶液。每次洗涤中，室温静置20分钟，2-8°C 7500g离心5分钟，弃上清，重复3次。最后清洗后，加入2ml无水乙醇，漩涡混匀蛋白沉淀，室温静置20分钟，然后2-8°C 7500g离心5分钟以沉淀蛋白质，弃上清。3. 蛋白质溶解a. 干空干燥蛋白质沉淀5-10分钟，用1% SDS溶解蛋白质，反复吹打，50°C温浴至完全溶解，不溶物2-8°C 10000g离心10分钟去除。分离得到的蛋白质样品可用于WesternBlot或者-20°C保存（长期保存建议-80°C） 【注意事项】 1. RNA 酶污染注意事项：a. 提取过程用品均经过去RNA酶处理：玻璃制品可以150 °C烘烤4小时 ，塑料制品可浸泡于0.5M NaOH溶液后用清水冲洗并高压灭菌，吸头及离心管类尽量使用一次性无酶吸头及离心管b. 佩戴手套及口罩及护目镜：皮肤上常含有细菌和霉菌，可污染RNA制备，且同时是RNA酶来源，同时RNAEx ZOL Reagent对皮肤有一定毒性，建议佩戴手套及口罩及护目镜。c. 尽量于通风橱内提取：避免吸入提取过程中有毒物质。2. 安全性问题：a. 本品在与皮肤接触及吞咽有毒性，可导致烧伤。与皮肤接触后，应立即用洗涤剂和大量水冲洗。如感到身体不适，应立即就医3. 存储性问题：a. 实验已证明RNAEx ZOL Reagent室温下可稳定保存12个月，不过依然建议储存于2-8°C以保证最佳性能，尽量避光保存。

【保存条件】 室温保存，有效期1年 【概述】 无酶无菌水是超纯水经DEPC处理后，再高压灭菌而得到的不含DNA酶或RNA酶的无菌水。经检测无核酸酶和蛋白酶活性，可用于cDNA合成、体外转录、RNA提取等对核酸酶敏感的分子生物学试验和相关产品的稀释或溶解。 【注意事项】 1. 仅限于科研使用，不可用于各种食品药品或临床治疗中。 2. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

【保存条件】 干粉及溶解液4℃避光保存，有效期12个月；制成溶液后-20℃分装保存，有效期半年。 【概述】 10%PAGE胶凝固剂即为10%APS，常用于PAGE胶的配制，建议现用现溶。4℃下可保存一周，其在室温下不稳定，不建议长期放置于室温。-20℃分装保存可最大限度保证后续产品使用效果。 【使用建议】 每管干粉加入1ml溶解液，吹打混匀，将干粉溶解成10%（w/v)溶液即可。 制成溶液后须-20℃避光保存，有效期约半年；4℃下可保存一周，建议现用现溶。 【注意事项】 1. PAGE胶凝聚的速度与温度及光照关系密切，可通过适当调节APS的用量，控制在不同的环境下凝胶凝聚的速度。 2. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。