产品介绍 本产品适合于从5~50mg动物组织或小于5×106培养细胞样品中提取总DNA。试剂盒基于硅胶柱纯化技术，提取过程中无需使用有毒的酚氯仿抽提，也无需进行耗时的醇类沉淀，整个提取过程只需30~60min。得到的DNA可直接用于PCR/Southern Blot检测等实验。 存储条件 本产品除Proteinase K Solution和RNase A Solution外，可在室温(15~25℃)保存12个月。低温下Buffer GL或Buffer GE可能会有沉淀形成，使用时需55℃水浴让沉淀完全溶解。Proteinase K溶液和RNase A溶液收到后请分装保存于-20℃。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml离心管 开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项： □ 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。 □ 若Buffer GL或Buffer GE中有沉淀，可在37℃水浴中重新溶解，摇匀后使用。 □ Proteinase K Solution和RNase A Solution建议分装保存于-20℃，反复冻融会影响其活性。 □ 小型高速离心机（~13000rpm） □ 水浴锅温度分别设置至56℃和70℃。

产品介绍 本试剂盒适用于哺乳动物血液核酸提取，不含苯酚等有毒化学试剂组分，采用独特的缓冲液配方Buffer IRB最大限度去除血液抑制剂的影响，同时应用先进的硅胶膜吸附技术，操作简单、快速。得到的DNA 比传统试剂盒纯度更高，可直接用于酶切、转化、测序及PCR 等分子生物学实验。 存储条件 本产品除Proteinase K溶液和RNase溶液外，可在室温(15~25℃)保存12个月。低温下Buffer BL或Buffer IRB可能会有沉淀形成，使用时需55℃水浴让沉淀完全溶解。Proteinase K溶液和RNase A溶液冰袋运输，收到产品后请分装保存于-20℃。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5/2ml离心管 开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 ● Buffer BL和Buffer IRB是如有混浊现象，可在55℃水浴中加热几分钟，即可恢复澄清。● 基因组提取所有步骤都在室温（15-25°C）下进行。开始前试剂准备 □ 按瓶子标签所示，Buffer BL及Buffer IRB中加入适量的无水乙醇稀释，于室温密封保存。DNA浓度及纯度检测 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测纯度与浓度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O，比值会略低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。 应用领域 该方案适合于从约10μl-1ml人类的抗凝血液、血清、血浆、尿液、或其它体液样品中直接提取总DNA。该方案直接对样品进行裂解消化，获得的DNA包括了基因组 DNA(如淋巴细胞、线粒体DNA、游离的DNA(>100bp)、以及病毒DNA(如乙肝)等；

产品介绍 本试剂盒采用可高效、专一结合DNA的硅基质材料和独特的缓冲液系统，适用于从PCR产物、限制性内切酶体系、或其他酶促反应液中回收100bp-10kb的DNA片段，回收率可达90%以上，每个吸附柱每次可吸附的DNA量为20µg。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。本产品仅供科研使用，请勿用于医药、临床治疗、食品及化妆品等用途。 存储条件 该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存12个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，Buffer PB可能产生沉淀，使用前可在37℃水浴中预热10 min至沉淀溶解。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml离心管 开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 □ 本试剂盒为无选择性的回收溶液内所有DNA片段，如需回收特定片段，同时去除其他不同大小的片段，请选择琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒。 □ 回收<100bp或>10kb的DNA片段时，应加大Buffer PB的体积，延长吸附和洗脱时间。 □ 回收率与初始DNA量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。 □ 高温及潮湿等不利环境因素对吸附柱产生影响，请将吸附柱储存于阴凉干燥的环境中。 开始前试剂准备 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 □ 确认Buffer PB溶液显示为黄色。 DNA浓度及纯度检测： 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品介绍 本试剂盒采用可高效、专一结合DNA的硅基质材料和独特的缓冲液系统，适用于从PCR产物、限制性内切酶体系、或其他酶促反应液中回收100bp-10kb的DNA片段，回收率可达90%以上，每个吸附柱每次可吸附的DNA量为20µg。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。本产品仅供科研使用，请勿用于医药、临床治疗、食品及化妆品等用途。 存储条件 该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存12个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，Buffer PB可能产生沉淀，使用前可在37℃水浴中预热10 min至沉淀溶解。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml离心管 开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 □ 本试剂盒为无选择性的回收溶液内所有DNA片段，如需回收特定片段，同时去除其他不同大小的片段，请选择琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒。 □ 回收<100bp或>10kb的DNA片段时，应加大Buffer PB的体积，延长吸附和洗脱时间。 □ 回收率与初始DNA量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。 □ 高温及潮湿等不利环境因素对吸附柱产生影响，请将吸附柱储存于阴凉干燥的环境中。 开始前试剂准备 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 □ 确认Buffer PB溶液显示为黄色。 DNA浓度及纯度检测： 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品介绍 本试剂盒采用可高效、专一结合DNA的硅基质材料和独特的缓冲液系统，可从各种浓度的TAE或TBE琼脂糖凝胶上回收70bp-10kbp大小的DNA片段，同时除去蛋白质、其它有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质，回收率可达80%以上。每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为20μg。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。 存储条件 该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存12个月。Buffer QG可能产生沉淀，若有沉淀使用前可在55℃水浴中预热10 min以溶解。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml离心管 开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 □ 电泳时最好使用新的电泳缓冲液，以免影响电泳和回收效果。 □ 如下一步实验要求较高，核酸电泳时则应尽量使用TAE电泳缓冲液。 □ 切胶时，紫外照射时间应尽量短，以免对DNA造成损伤。 □ 如果回收率较低，可在胶充分溶解后检测pH值，如pH值大于7.5，可向含有DNA的胶溶液中加10-30µl 3M醋酸钠（pH5.2）将pH值调到5-7之间。 □ 回收<70bp或>10kbp的DNA片段时，应加大Buffer QG的体积，延长吸附和洗脱时间。 □ 回收率与初始DNA量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。 □ 高温及潮湿等不利环境因素对吸附柱产生影响，请将吸附柱储存于阴凉干燥的环境中。 开始前试剂准备 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 □ 确认Buffer QG溶液显示为黄色。 DNA浓度及纯度检测 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品介绍 本试剂盒采用彩色溶液配方，提取步骤更清晰可视。同时应用先进的硅胶膜吸附技术，操作简单、快速。菌体经碱裂解法处理后通过离心吸附柱，专一性结合DNA，洗去杂质，高效快速提取多至40μg的质粒DNA。本试剂盒采用独特的缓冲液配方，最大限度去除蛋白杂质及其它有机化合物，每次可处理1-5ml菌液。得到的DNA比传统试剂盒纯度更高，可直接用于酶切、转化、测序及PCR等分子生物学实验。 存储条件 除RNase A Solution外，其它组份在室温（15-25°C）下干燥保存稳定至少12个月。RNase A Solution收到后请冻于-20°C，加至Buffer P1后混合液保存于4°C。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml/2ml离心管 开始前注意事项 □ Buffer P1为粉红色澄清溶液，Buffer P2为紫红色澄清溶液，Buffer N3为黄色澄清溶液。 □ Buffer P2和Buffer N3如有混浊现象，可在37℃水浴中加热5-10min即可恢复澄清。 □ 处理低拷贝质粒时，按比例扩大Buffer P1、Buffer P2和Buffer N3的用量，可处理5~10ml细菌培养液。 □ 质粒提取所有步骤都在室温（15-25°C）下进行。 □ 试剂颜色不会影响到质粒提取的浓度及纯度，请放心使用。 开始前试剂准备 □ 短暂离心RNase A Solution管，把全部RNase A Solution转移至Buffer P1中，并于2-8℃保存。 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 DNA浓度及纯度检测： 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品介绍 本试剂盒采用彩色溶液配方，提取步骤更清晰可视。同时应用先进的硅胶膜吸附技术，操作简单、快速。菌体经碱裂解法处理后通过离心吸附柱，专一性结合DNA，洗去杂质，高效快速提取多至40μg的质粒DNA。本试剂盒采用独特的缓冲液配方，最大限度去除蛋白杂质及其它有机化合物，每次可处理1-5ml菌液。得到的DNA比传统试剂盒纯度更高，可直接用于酶切、转化、测序及PCR等分子生物学实验。 存储条件 除RNase A Solution外，其它组份在室温（15-25°C）下干燥保存稳定至少12个月。RNase A Solution收到后请冻于-20°C，加至Buffer P1后混合液保存于4°C。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml/2ml离心管 开始前注意事项 □ Buffer P1为粉红色澄清溶液，Buffer P2为紫红色澄清溶液，Buffer N3为黄色澄清溶液。 □ Buffer P2和Buffer N3如有混浊现象，可在37℃水浴中加热5-10min即可恢复澄清。 □ 处理低拷贝质粒时，按比例扩大Buffer P1、Buffer P2和Buffer N3的用量，可处理5~10ml细菌培养液。 □ 质粒提取所有步骤都在室温（15-25°C）下进行。 □ 试剂颜色不会影响到质粒提取的浓度及纯度，请放心使用。 开始前试剂准备 □ 短暂离心RNase A Solution管，把全部RNase A Solution转移至Buffer P1中，并于2-8℃保存。 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 DNA浓度及纯度检测： 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品介绍 本试剂盒采用彩色溶液配方，提取步骤更清晰可视。同时应用先进的硅胶膜吸附技术，操作简单、快速。菌体经碱裂解法处理后通过离心吸附柱，专一性结合DNA，洗去杂质，高效快速提取多至40μg的质粒DNA。本试剂盒采用独特的缓冲液配方，最大限度去除蛋白杂质及其它有机化合物，每次可处理1-5ml菌液。得到的DNA比传统试剂盒纯度更高，可直接用于酶切、转化、测序及PCR等分子生物学实验。 存储条件 除RNase A Solution外，其它组份在室温（15-25°C）下干燥保存稳定至少12个月。RNase A Solution收到后请冻于-20°C，加至Buffer P1后混合液保存于4°C。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml/2ml离心管 开始前注意事项 □ Buffer P1为粉红色澄清溶液，Buffer P2为紫红色澄清溶液，Buffer N3为黄色澄清溶液。 □ Buffer P2和Buffer N3如有混浊现象，可在37℃水浴中加热5-10min即可恢复澄清。 □ 处理低拷贝质粒时，按比例扩大Buffer P1、Buffer P2和Buffer N3的用量，可处理5~10ml细菌培养液。 □ 质粒提取所有步骤都在室温（15-25°C）下进行。 □ 试剂颜色不会影响到质粒提取的浓度及纯度，请放心使用。 开始前试剂准备 □ 短暂离心RNase A Solution管，把全部RNase A Solution转移至Buffer P1中，并于2-8℃保存。 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 DNA浓度及纯度检测： 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品介绍 本试剂盒采用彩色溶液配方，提取步骤更清晰可视。同时应用先进的硅胶膜吸附技术，操作简单、快速。菌体经碱裂解法处理后通过离心吸附柱，专一性结合DNA，洗去杂质，高效快速提取多至40μg的质粒DNA。本试剂盒采用独特的缓冲液配方，最大限度去除蛋白杂质及其它有机化合物，每次可处理1-5ml菌液。得到的DNA比传统试剂盒纯度更高，可直接用于酶切、转化、测序及PCR等分子生物学实验。 存储条件 除RNase A Solution外，其它组份在室温（15-25°C）下干燥保存稳定至少12个月。RNase A Solution收到后请冻于-20°C，加至Buffer P1后混合液保存于4°C。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml/2ml离心管 开始前注意事项 □ Buffer P1为粉红色澄清溶液，Buffer P2为紫红色澄清溶液，Buffer N3为黄色澄清溶液。 □ Buffer P2和Buffer N3如有混浊现象，可在37℃水浴中加热5-10min即可恢复澄清。 □ 处理低拷贝质粒时，按比例扩大Buffer P1、Buffer P2和Buffer N3的用量，可处理5~10ml细菌培养液。 □ 质粒提取所有步骤都在室温（15-25°C）下进行。 □ 试剂颜色不会影响到质粒提取的浓度及纯度，请放心使用。 开始前试剂准备 □ 短暂离心RNase A Solution管，把全部RNase A Solution转移至Buffer P1中，并于2-8℃保存。 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 DNA浓度及纯度检测： 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

产品介绍 本试剂盒采用可高效、专一结合DNA的硅基质材料和独特的缓冲液系统，可从各种浓度的TAE或TBE琼脂糖凝胶上回收70bp-10kbp大小的DNA片段，同时除去蛋白质、其它有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质，回收率可达80%以上。每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为20μg。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。 存储条件 该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存12个月。Buffer QG可能产生沉淀，若有沉淀使用前可在55℃水浴中预热10 min以溶解。 需要额外准备的材料 □ 无水乙醇（96%-100%） □ 无菌1.5ml离心管 开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 □ 电泳时最好使用新的电泳缓冲液，以免影响电泳和回收效果。 □ 如下一步实验要求较高，核酸电泳时则应尽量使用TAE电泳缓冲液。 □ 切胶时，紫外照射时间应尽量短，以免对DNA造成损伤。 □ 如果回收率较低，可在胶充分溶解后检测pH值，如pH值大于7.5，可向含有DNA的胶溶液中加10-30µl 3M醋酸钠（pH5.2）将pH值调到5-7之间。 □ 回收<70bp或>10kbp的DNA片段时，应加大Buffer QG的体积，延长吸附和洗脱时间。 □ 回收率与初始DNA量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。 □ 高温及潮湿等不利环境因素对吸附柱产生影响，请将吸附柱储存于阴凉干燥的环境中。 开始前试剂准备 □ 按瓶子标签所示，加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW，于室温密封保存。 □ 确认Buffer QG溶液显示为黄色。 DNA浓度及纯度检测 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。 OD260/OD280比值应为1.7-2.0，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。